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WinSera無外泌體血清的常見問題？

能不能用無血清培液養(yǎng)，能不能用正常培液養(yǎng)到70%換無外泌體血清的培液？

有些paper確實會使用無血清培養(yǎng)液培養(yǎng)細胞然后收上清分離外泌體，論壇中也有已經(jīng)發(fā)表文章的朋友使用該方法，該方法是使用含有外泌體的血清培養(yǎng)細胞到一定密度，然后吸去培液，PBS洗數(shù)次之后換無血清培液進行培養(yǎng)即可。但是目前很多高檔次的paper基本都是使用含無外泌體血清的培液進行細胞培養(yǎng)的，無外泌體血清可以按照之前hzangs的推文介紹的方法制備。   如果你的無外泌體血清比較珍貴，也可以考慮先將細胞使用有外泌體血清培養(yǎng)，細胞長到一個合適的密度如70%-80%左右時，吸去培液，37℃預熱的PBS清洗細胞3-5遍，換無外泌體血清的培液即可。

那種分離方法好？

使用何種方法進行外泌體的分離是一個比較復雜的問題。這個問題涉及到你計劃的下游實驗是什么。通常來說下游實驗涉及RNA的，對外泌體純度要求可能不高，但是如果下游研究設計蛋白，那么對外泌體的純度要求還是比較高的。在此列出常見分離方法的一些優(yōu)缺點供大家根據(jù)自己的實驗進行選擇。超速離心法：操作繁瑣，技術難度高，耗時長，分離外泌體純度較高，目前分離外泌體的金標準；聚合物沉淀法：操作簡便，技術難度低，耗時短，分離外泌體純度低，可能被reviewer質疑；膜親和法：操作簡便，適用于RNA實驗，耗時短，技術難度低，分離外泌體的純度尚可接受；凝膠排阻法：操作相對簡單，技術難度略高，分離外泌體純度高，但很難保證無菌；抗體親和沉淀法：操作簡單，純度尚可，但是抗體很貴并且抗體不可回收利用。

用哪個marker做WB好？常用的是CD63、CD81等等，

 外泌體蛋白做WB用什么內參基因？

外泌體做WB的內參基因一直存在爭議。但是按照David Lyden曾發(fā)表于CNS的paper，actin和GAPDH 都可以的。

用多少培液收外泌體？

培液使用量取決于細胞系。有些細胞系外泌體釋放量高，幾毫升即可；有些釋放量低，需要上百毫升。一般來說一個普通的細胞系，用超離分離外泌體，第一次摸索條件，起始培液量最好50ml以上。